Diagnostika a léčba ovariálních cyst u krav

Je známo, že onemocnění vaječníků se u samic skotu různého věku vyskytují poměrně často. Pro pochopení těchto a dalších poruch reprodukčního systému je užitečné použít systém regulace sexuálních procesů, který navrhl A. P. Studentsov ve své monografii „Diagnostika březosti a neplodnosti hospodářských zvířat“ (1949), která byla zahrnuta ve 2., 3. a 4. vydání jeho učebnice „Veterinární porodnictví a gynekologie“ (1953, 1963, 1970). V 5. a 6. vydání učebnice bylo schéma doplněno V. S. Šipilovem a kol. (1980, 1986) (viz obr.) a v této podobě bylo zahrnuto do dalších dvou vydání učebnice (1999, 2005). Schéma A. P. Studentsova neztratilo svůj význam dodnes, protože zdůrazňuje, že normální činnost reprodukčních orgánů probíhá pouze za optimálních životních podmínek, z nichž hlavní jsou: oslunění, krmení a kontakt se samcem. Je také důležité vzít v úvahu, že pod vlivem nepříznivých faktorů prostředí zvířete se rozvíjí stres vedoucí k neplodnosti zvířat (G. Selye, 1960; D. A. Ustinov, 1976; S. I. Plyashchenko a V. T. Sidorov, 1987; S. N. Preobrazhensky, O. N. Preobrazhensky, 2001,2006, 2003; A. G. Nezhdanov, 5,6 atd.). Vzhledem k tomu, že stres mění činnost nervového a endokrinního systému, výrazně to ovlivňuje vývoj patologických procesů ve vaječnících, mezi nimiž nejčastější jsou ovariální hypofunkce, tvorba perzistujícího žlutého tělíska a ovariální cysty. Hypofunkce vaječníků se vyskytuje u 38–1994 % (V. N. Šejkin a Ju. D. Klinský, 1994; L. K. Popov a M. K. Popovová, 1994; A. S. Terešenkov, 55,5) a dokonce u 69,1–1998 % (M. N. Lenina, XNUMX) všech případů neplodnosti u krav a jalovic. Její výskyt je důsledkem vlivu různých příčin na organismus samice, proto by léčba měla být prováděna s ohledem na etiologii a je obtížné počítat s úspěchem bez odstranění příčin vedoucích k hypofunkci vaječníků.

Nelze než souhlasit s N. A. Vlasovou (1988); N. I. Polyantsevem a kol. (1986, 1988, 1989); V. P. Gončarovem (1994); K. G. Dashu-kaevovou (1994) a dalšími odborníky, že ovariální hypofunkce je onemocnění, jehož patogeneze je založena na vlivu stresových faktorů na organismus. Pro úspěšnou léčbu tohoto onemocnění je proto nutné zastavit nebo významně snížit vliv stresoru, protože pouze v tomto případě je možné účinně používat hormonální a jiné léky. Podle našeho názoru existuje pro většinu forem neplodnosti specifická skupina stresorů, které narušují činnost pohlavních žláz. Koneckonců, hypofunkce vaječníků se může vyvinout s alimentární (K.K. Znamensky et al., 1988; K.D. Valyushkin, 1988 atd.) nebo klimatickou (S.I. Plyashchenko a V.T. Sidorov, 1987; K.G. Dashukaeva, 1994 atd.) neplodností.

Hormonální léky se často používají k léčbě ovariální hypofunkce. Tak V. U. Davydov a kol. (1988) podali 2 ml estrofanu. Při použití estufalanu 500 mcg a SZK 3000 IU do 70 dnů po jejich podání se sterilovalo 90 % žen, zatímco v kontrole to bylo 25 % (V. N. Karymov, 1986).

N. I. Poljancev a P. B. Tsygankov (1988) injekčně aplikovali surfagon poprvé v dávce 50 mcg a o 10 dní později v dávce 10 mcg 35 kravám. V první fázi excitace pohlavního cyklu došlo k oplodnění u 22 krav. Stejný přípravek použily L. K. Popov a M. K. Popova (1994) (viz tabulka).

Vzhledem k významné roli stresu ve výskytu ovariální hypofunkce podával A.K. Gulyansky (1994) adaptogeny intramuskulárně: extrakt z eleutherokoku (2 ml/100 kg hmotnosti) a ethimizol (1 mg/kg hmotnosti) třikrát; březost proběhla u 45 % a 50 % krav do 2 měsíců.

V.N. Šejkin a Ju.D. Klinský (1994) poznamenávají, že léčba ovariální hypofunkce u krav je účinnější do 40 dnů po porodu, kdy v důsledku podání 2500 IU GSZK do 7–10 dnů po injekci došlo k říji u 82–87 % krav a oplodnění bylo dosaženo u 50–61 % krav.

A.A. Osetrov (1994) zjistil, že při nízké úrovni krmení jalovic se účinnost používání SZK snižuje. A.M. Semivolos (1983), který použil několik variant hormonální terapie u jalovic s hypofunkcí, dospěl k závěru, že žádná z nich „neusnadňuje obnovení plodnosti u všech jalovic s ovariální hypofunkcí klimatického původu“. Domnívá se také, že bez organizace aktivního pohybu a oslunění není možné obnovit plodnost pouze hormonálními přípravky.

Účinnost léčby krav a jalovic s ovariální hypofunkcí.

E. Ch. Smirnovová (1981) objevila hypofunkci vaječníků u krav s nedostatkem jódu v potravě. Pomocí suplementace jodidem draselným v dávce 0,7-1,5 mcg denně dosáhla obnovení fáze excitace pohlavního cyklu u 81 % krav. Toto onemocnění vzniklo proto, že dojnice vylučují s každým litrem mléka 20-120 mcg jódu a při jeho nedostatku je u samic narušena sekrece luteinizačního hormonu, což vede k absenci ovulace.

K.K. Zanevsky a kol. (1988) popsali snížené hladiny mědi, niklu a zinku u krav s hypofunkcí vaječníků. Mnoho příkladů vlivu krmení na funkci vaječníků u samic je uvedeno v monografii E. Vinzera (1976). Je zřejmé, že hormonální terapie nebude úspěšná při léčbě hypofunkce vaječníků, která se vyskytuje při alimentární neplodnosti.

V. S. Šipilov a A. M. Semivolos (1988) prokázali, že v případě ovariální hypofunkce bylo použití testovacích býků účinnější než použití hormonů. Jak zjistili I. I. Rodin, G. G. Kozlov a kol. (1981), kontakt s testovacím býkem podporuje zvýšení hladiny luteinizačního hormonu v krevní plazmě, což zajišťuje plnou ovulaci a vyšší oplodnění.

Aktivní cvičení, které používali V. S. Šipilov a A. M. Semivolos (1988), eliminuje a předchází hypokinezi (hypodynamii), která vede ke stresu u zvířat. Žádné léky proto nemohou nahradit aktivní pohyb. Normalizace krmení a údržby hospodářských zvířat je tedy základem léčby a prevence ovariální hypofunkce a dalších gynekologických patologií.

Nicméně někteří odborníci doporučují eliminovat ovariální hypofunkci komplexní terapií. V.P. Gončarov (1985) tak navrhuje podávat tkáňové přípravky v dávce 5 ml/100 kg hmotnosti třikrát s intervalem 3-5 dnů a kombinovat s jednou injekcí SZK, gravohormonu nebo ovariotropinu v dávce 1-2 tisíc ME.

N. I. Poljancev a V. D. Slobodskoj (1984) používali látky, které zvyšují nespecifickou reaktivitu organismu nebo chrání před účinky stresu (kolostrum,

1. Progesteron 20,30, 50 a 24 mg (v olejovém roztoku) s odstupem 48 hodin; 9 hodin po poslední injekci progesteronu subkutánně – gravohormon 2 myších jednotek/kg tělesné hmotnosti 1,5. Kontakt s testovacím býkem po dobu 2-2 hodin 3krát denně 3. Kontakt s testovacím býkem a denní aktivní pohyb po dobu 5-4 km XNUMX. Kontrola

75 % hnojeno 92 % hnojeno 33,3 % hnojeno

B. C. Shipilov; A. M. Semivolos (1988)

1. Dvakrát s 12hodinovým intervalem follitropin 150 IU 2. Surfagon 50 mcg a po 10 dnech dalších 10 mcg

71,4 % hnojeno 42,8 % hnojeno

OK. Popov a M.K. Popova (1994)

1. ASD-frakce 25% roztok na séru proti paratyfu a kolibacilóze telat intramuskulárně 20 ml a současně 2 ml 0,5% roztoku proserinu 2. GSŽK 1000 IU (2500 IU) jednorázově intramuskulárně 3. 10% suspenze ASD-frakce 2 na tetravitu

K oplodnění došlo o 22 dní dříve než ve 2. skupině.

Náklady jsou 8krát vyšší než ve skupině 1. Obnovení pohlavních cyklů o 7 dní dříve než ve skupině 1.

N. A. Vlasová (1988)

autohemoterapie, tkáňové biostimulanty, eleuterokok, novokain). Jedné skupině krav bylo v den otelení subkutánně injikováno 25-30 ml mleziva, druhá skupina sloužila jako kontrola. Hypofunkce vaječníků byla v pokusné skupině zaznamenána 5krát méně často než v kontrolní skupině. Léčba mlezivem je známá již mnoho let. V případě nedostatku tkáňových preparátů by se měla široce používat. Mlezivo se odebírá od krav, u kterých se placenta oddělila do 3 hodin, a nejpozději do 10-12 hodin po narození telete. Čerstvé mlezivo lze podat subkutánně v dávce 20-25 ml. Léčba spočívá ve 2-3 injekcích prováděných v intervalech 6 dnů, proto by se mlezivo mělo konzervovat. Za tímto účelem se na každých 100 ml mleziva přidává 10 ml 0,5% fenolového maliníku nebo 200 tisíc jednotek penicilinu a streptomycinu. Konzervované mlezivo se skladuje v chladničce nebo termosce s ledem při teplotě 2–4 °C. Před injekcí se potřebné množství mleziva zahřeje na teplotu 30–35 °C (mlezivo se při přehřátí sráží).

Závěrem je třeba poznamenat, že termín „hypofunkce vaječníků“ se používá ve vědecké literatuře, ale nepoužívá se v akademické literatuře (A.P. Studentsov a kol. 1999, 2005), proto je vhodné tuto otázku řešit na příští konferenci veterinárních porodníků Ruské federace.

Spolu s hypofunkcí vaječníků je častou příčinou neplodnosti u krav a jalovic perzistující žluté tělísko. Četnost těchto případů se pohybuje od 6,4 do 16,1 % (N.I. Polyantsev, A.N. SINYAVIN, 1989; G.G. Kharuta, 1988; S.V. Zhukova, 1998) do 39,1 až 49,3 % (N.N. Novych a kol., 1998; L.B. Milyauskas a kol., 1976; A.K. Terešenkov, 1994).

Hlavními příčinami tohoto onemocnění jsou nedostatečné krmení, nedostatek aktivního pohybu a vysoká mléčná produktivita (A.P. Studentsov, V.S. Shipilov, L.G. Subbotina, O.N. Preobrazhensky, 1985; G.V. Zvereva a kol., 1985; V.P. Goncharov, 1985; atd.). K retenci žlutého tělíska dochází také při zánětlivých procesech v děloze a dalších pohlavních orgánech (A.P. Studentsov, 1949; Ya.G. Gubarevič, 1956; D.D. Logvinov, 1964; V.P. Goncharov, 1986; atd.). S.P. Khomin a V.I. Zaviryukha (1994) se domnívají, že retence žlutého tělíska u krav je příznakem poruchy sekreční funkce endometria, jejíž obnova probíhá za účasti progesteronů.

V. S. Šipilov (1977) zjistil, že vynechání první fáze excitace pohlavního cyklu bez inseminace, a to i u zdravých krav během stájového období, a to i přes zajištění procházek, vede k tvorbě přetrvávajících žlutých tělísek ve vaječnících a anafrodizii různého trvání.

Existuje několik známých metod léčby krav a jalovic s perzistujícími žlutými tělísky. Nejstarší z nich je enukleace žlutého tělíska, která byla poprvé provedena v roce 1875 v Dánsku a v roce 1928 vylepšena E. Hessem (G.V. Zvereva a kol., 1976,1985, 1943). Tato technika byla ve skutečnosti jedinou až do poloviny minulého století a doporučovali ji N.F. Myškin (1956), Ja.G. Gubarevič (1949) a další. A.P. Studentsov (1989) však doporučoval od této techniky, pokud je to možné, upustit, protože stlačení žlutého tělíska může způsobit krvácení, ooforitidu a periooforitidu. To potvrdily i odpovídající muzejní preparáty a jejich fotografie, prezentované ve všech osmi vydáních jeho učebnice veterinárního porodnictví. Podle N.I. Poljanceva a A.N. Podle Sinyaviny (2) je enukleace zadrženého žlutého tělíska škodlivá technika, protože v důsledku traumatu „může ztráta krve dosáhnout 3–30 litrů“. Kromě toho se po enukleaci perzistujícího žlutého tělíska v 39–1989 % případů tvoří srůsty vaječníku s okrajem vejcovodu a okolními tkáněmi (NI Polyantsev, 2005). Navzdory výše uvedeným dlouhodobě známým námitkám proti této technice je však v nejnovějším vydání učebnice veterinárního porodnictví (1994) enukleace perzistujícího žlutého tělíska nadměrně chválena. Jiným terapeutickým technikám je věnována jen velmi malá pozornost. V posledních několika desetiletích byly prostaglandiny úspěšně použity k řešení perzistujícího žlutého tělíska, o čemž svědčí experimenty A. S. Těrešnikova (1998) a dalších, jejichž výsledky uvádíme v tabulce. Nejjednodušší způsob, jak určit výhodnost jakékoli terapeutické techniky, je porovnat její účinnost s jinými léčebnými postupy. Zhukova SV (XNUMX) zjistila, že stlačení žlutého tělíska je účinné pouze v polovině případů, zatímco použití prostaglandinů je mnohem účinnější.

Pro léčbu krav s perzistujícím žlutým tělískem se také doporučuje použití následující kombinace léků: 0,1% roztok karbachaminu nebo 0,5% roztok proserinu, 2-3 ml dvakrát s intervalem 48 hodin a po 4-5 dnech 1200-2000 U SJK, KJK nebo gravohormonu (G.V. Zvereva a kol. 1976,1985, XNUMX).

N. V. Bezborodov a P. N. Bezborodov (2003) u krav s perzistujícím žlutým tělískem po jednorázové intramuskulární injekci pregnandienu v dávce 5 ml na kus dosáhli míry plodnosti 72,9–74,0 %.

V souvislosti s rozmanitou etiologií retence žlutého tělíska si zaslouží zvláštní pozornost různé metody patogenetické terapie. A. P. Studentsov (1949) zaznamenal pozitivní účinek po jednorázové injekci 20-30 ml ovariolyzátu M. P. Tušnova. Později byly 25-2krát s odstupem 3-8 dnů použity různé tkáňové preparáty o objemu 9 ml nebo dvakrát s odstupem 70-80 dnů byla použita autohemoterapie 7-8 ml krve (G. V. Zvereva a kol., 1985). Léčbu je vhodné provádět injekcemi mleziva, stejně jako při hypofunkci vaječníků. Používají se novokainové blokády podle V. V. Mosina, G. S. Fatějeva nebo intraaortální injekce novokainu.

Jednou ze starých, ale účinných metod je masáž vaječníků a dělohy, jedna seance denně po dobu 3-5 dnů po dobu 5 minut na každé straně. Tento postup zvyšuje prokrvení, což podporuje resorpci žlutého tělíska (V.P. Gončarov, 1985). Masáž lze kombinovat s jednou injekcí SZK (G.V. Zvereva a kol., 1985).

Cystická degenerace vaječníků se vyskytuje u 4,4 % (G. P. Dyulger, 1987) až 13,5 % (G. A. Kononov, 1977) neplodných krav. Rozlišuje se mezi folikulárními a luteálními cystami. Folikulární cysty se tvoří z neovulovaných folikulů během anovulačních pohlavních cyklů. Cysty si po určitou dobu zachovávají hormonální aktivitu a poté obvykle odezní. Strukturální znaky cyst neumožňují přesné rozlišení mezi folikulárními cystami a luteálními cystami rektálním vyšetřením a jednorázovým stanovením hladiny progesteronu v periferní krevní plazmě krav s ovariálními cystami (V. S. Shipilov, G. P. Dyulger, 1988). Později G. P. Dyulger a P. A. Elkin (2006) ukázali, že nejpohodlnějším způsobem vyšetření vaječníků u krav je vizuální echografie, která umožňuje detekovat nejen cysty, ale i velké folikuly, kompaktní a cystická žlutá těla. Zemlyankin V.V. a A.M. Semivolos a kol. (2003) pomocí morfobiochemických studií krav s folikulárním ovariálním systémem zjistili pokles koncentrace krevních destiček, což podle jejich názoru může sloužit jako jeden z testů pro diferenciální diagnostiku ovariálních cyst různého původu.

Během stájového období se cysty často vyskytují při nevyvážené stravě s nedostatkem vápníku (V.A. Pavlov, 1976; G.P. Dyulger, 1987; V.Ya. Nikitin a M.G. Vodolazsky, 1998) a karotenu a při nedostatečném pohybu (G.P. Dyulger, 1987). Vznik ovariálních cyst u krav nastává na pozadí metabolických poruch, především draslíku, sodíku, vápníku a fosforu, hořčíku a manganu. Cystickou degeneraci vaječníků podporuje zvýšená hladina estrogenů v krmivu (V.Ya. Nikitin a M.G. Vodolazsky, 1998).

Výskyt cyst je usnadněn prodlouženou laktací, komplikacemi během těhotenství, porodem, poporodním obdobím, přeskakováním fáze vzrušení pohlavního cyklu bez inseminace, chybami v krmení, chovu a vykořisťování krav (G.P. Dyulger, 1987).

V. S. Šipilov a G. P. Djulger (1990) po studiu změn v organismu krav zjistili, že v 90,2 % případů byly cysty při rektálním vyšetření definovány jako tenkostěnné, kolísavé kulovité útvary o průměru 2,1 až 6 cm a nejčastěji se nacházely v pravém vaječníku. U této patologie byla sexuální funkce krav často obnovena (z 66,7 % během 2měsíčního období), takže klinické příznaky onemocnění nebyly ve většině případů jasně projeveny. Při dlouhodobém průběhu onemocnění byla u krav v důsledku opakované tvorby cyst pozorována anafrodizie, méně často nymfomanie a virilismus.

Léčba cyst může být prováděna několika způsoby, ale hlavní je poskytnout kravám normální krmné podmínky, aktivní pohyb, oslunění a kontakt s býkem po vasektomii (V. S. Shipilov a kol., 1991; viz tabulka).

Neurosexuální podněty vycházející z mužské sondy v kombinaci se koitusem stimulují uvolňování endogenního luteinizačního hormonu, který způsobuje ovulaci nebo tvorbu luteální cysty s následným obnovením normálního pohlavního cyklu a oplodněním (A.P. Studentsov, V.S. Shipilov a kol., 1986).

K léčbě cyst se často používají hormonální léky. V. P. Gončarov (1985) navrhuje jednorázové podávání FZK nebo KZK v dávce 2,5–3 tisíc IU v kombinaci se 3 injekcemi 0,5% roztoku proserinu nebo 0,1% roztoku karbocholinu v dávce 2–4 ml, které se podávají obden, a po 6–8 dnech se FZK znovu podává v dávce 1200 IU nebo 2–2,5 tisíc IU ovariotropinu. Gonadotropní léky s úspěchem použil G. P. Dyulger (viz tabulka). V. A. Karamyšev (1994) podával u folikulárních cyst subkutánně 6 tisíc IU FZK a po 10–12 dnech intramuskulárně 2 ml klatraprostinu. A. S. Tereshnikov (1994) aplikoval kravám s cystami intramuskulárně 2 ml superfanu a zaznamenal nástup březosti u 83,3 % případů po 20,6+18,9 dnech.

Tabulka Účinnost léčby krav a jalovic s perzistujícím žlutým tělískem a cystami na vaječnících

Trvalé žluté tělísko

Experimentální návrh a léčba

Pokud rektální vyšetření odhalí ve vaječníku krávy „bublinu“ o průměru větším než 2 cm, pak se diagnóza cysty považuje za prokázanou (při absenci bolestivé reakce a zjevného narušení pohlavního cyklu).

Druhým důležitým úkolem diferenciální diagnostiky je odlišit folikulární cystu od luteální cysty.

U folikulární cysty ve vaječníku u zvířat se pozoruje zkrácení trvání pohlavních cyklů se zjevnými klinickými projevy nymfománie ve fázi sexuálního vzrušení, která je časově poněkud prodloužena. Teprve po degeneraci cysty, ke které dochází po 3-5 pohlavních cyklech, se mohou objevit klinické projevy anafrodizie.

V případě luteální cysty se při rektálním vyšetření zjistí silnější stěna cysty než v případě folikulární cysty (nejasný znak). Anamnéza stanoví dlouhodobou absenci fáze pohlavního vzrušení (po dobu jednoho nebo více měsíců) u neinseminované krávy. Rektálním vyšetřením se také vylučuje přítomnost březosti.

Léčba folikulárních cyst u krav

Léčebné režimy: 1 – rozdrcení cysty prsty přes stěnu konečníku; 2 – jednorázová subkutánní injekce 2 500 IU SZK, KZK, ovariotropinu v kombinaci se subkutánní injekcí 2 ml karbacholu nebo proserinu 3krát v intervalech 48 hodin. Po 6-8 dnech znovu podat stejné hormonální léky, ale v dávkách 1 200 IU SZK nebo 2000 2500-3 14 IU ovariotropinu; 5 – denně, po dobu 10 dnů, intramuskulární injekce 50-100 ml (1-2 mg) 3% roztoku progesteronu, stejně jako subkutánní karbachol nebo proserin podle schématu – tři injekce 48-50 ml v intervalech 100 hodin se současným perorálním podáním 6-8 g jodidu draselného. Po 2-3 dnech od zahájení léčby podat subkutánně 5-5 tisíce IU SZK; -+ – intramuskulární injekce 60% roztoku jodidu draselného po dobu 80 dnů v rostoucích dávkách: 100, 120, 140, 50 a 100 ml nebo perorální podávání s krmivem v dávce 5-2,5 mg; 5 – intramuskulární injekce dirigestranu v dávce 12-10 ml a po 20 dnech – subkutánně v dávce 6-125 mg estrofanu nebo enzaprostu; 3 – intramuskulární injekce nymfonu (progesteron 000 mg, choriový gonadotropin 5 7 IU, rozpuštěný v 6 ml rozpouštědla) jednou; 8 – jednorázová injekce 8-12 tisíc IU choriového gonadotropinu nebo uvolňujícího hormonu a po 2-8 dnech – 100 ml estufalonu nebo estrofanu subkutánně; 1 – jednorázová injekce 9 ml 400% roztoku novokainu do zevní iliakální tepny (podle I.P. Lipovtseva) v kombinaci se zavedením stejného roztoku do dutiny velké cysty nebo do tloušťky postiženého vaječníku v případě malého cystického procesu; 2,5 – jednorázová subkutánní injekce 10 mg 3% roztoku progesteronu s 2 ml trivitaminu a po 3 dnech – 2-0,5 tisíce IU gravohormonu nebo ovariotropinu a 10 ml 6% roztoku proserinu (každý lék v různých bodech injekce); 000 – jednorázová subkutánní injekce 11 100 IU choriového gonadotropinu; 17 – intramuskulárně 10 mg XNUMX-a-hydroxyprogesteron-kapronátu v kombinaci s XNUMX mg progesteronu.

Léčba krav s luteálními cystami

Léčebné režimy: 1 – intramuskulární injekce 10-20 mg: estrofan, enzaprost, dinoprost, estrumát nebo kloprostenol; 2 – subkutánní injekce 2,5-3 tisíc IU volných mastných kyselin v kombinaci s injekcemi proserinu nebo karbacholu; 3 – intramuskulárně 50-100 mg 1% roztoku progesteronu 3-5krát v intervalech 2-3 dnů nebo 400 mg 2,5% roztoku – 1krát a po 6-8 dnech – subkutánně 2,5-3 tisíc IU ovariotropinu; 4 – subkutánně 2 ml estrofanu nebo 5 ml enzaprostu a současně v jiném místě subkutánně 2,3-3 tisíc IU volných mastných kyselin nebo ovariotropinu; 5 – intraaortální podání 100 ml 1% roztoku novokainu (podle D.D. Logvinova); 6 – jednorázové intramuskulární podání 5 ml (20 mg) enzaprostu nebo 2krát s intervalem 11 dnů; 7 – tkáňová terapie, aktivní cvičení, vitaminizace, suplementace minerálů.

Prevence a léčba perzistujícího žlutého tělíska (PL)

Nejprve je nutné vyléčit všechny formy a stádia endo-, myo-, para-, perimetritidy a salpingitidy. Poté se může žluté tělísko rozpustit a folikuly začnou dozrávat. Před léčbou zvířete s PLWH je nutné pomocí diagnostických metod vyloučit přítomnost klinických a latentních zánětlivých procesů v genitáliích. Pokud jsou přítomny, předepsat intenzivní komplexní terapii pro stanovená onemocnění.

Fáze prevence perzistence žlutých tělísek zahrnují: prevenci ketózy a acidózy, patologický porod, poporodní a gynekologická onemocnění.

Účinným prostředkem pro lýzu žlutého tělíska jsou přípravky obsahující prostaglandin F-2a: estrofan, estrumát nebo kloprostenol. Méně často se používá enukleace povrchově umístěných žlutých tělísek (snadno oddělitelných) stěnou konečníku, ale V.S. Šipilov kategoricky odmítá chirurgické oddělení žlutého tělíska, protože po takové operaci jsou možné zánětlivé procesy (ovariatida).

Prevence folikulárních cyst ve vaječnících

Ovulace zralých folikulů je často narušena v důsledku nízkých koncentrací luteotropního hormonu (hypofunkce hypofýzy), což je pozorováno u zvířat s metabolickými poruchami, jako je ketóza a acidóza. Nerovnováha v krmivu krav pro makro- a mikroprvky a vitamíny také narušuje syntézu hormonů (a enzymů). Preventivní opatření proto musí začít vyvážením krmiva pro všechny důležité biologicky aktivní látky.

Přímá prevence folikulárních ovariálních cyst se provádí podle následujícího schématu: zvýšení osvětlení nebo doby trvání osvětlení zvířat v areálu, aktivní a pravidelný pohyb za slunečných a teplých dnů, komunikace s testovacím býkem, vitaminizace zvířat (vitaminy A, D a E), zařazení 8-9 kg dobře olistěného sena z obilovin a luštěnin, krmné řepy do stravy čerstvě otelených krav, pro zvýšení alkalické rezervy v krvi, tj. vyvážení stravy acidobazickými ekvivalenty a poměrem cukru a bílkovin.

Léky, které spolehlivě zabraňují PJH, jsou FZK, KZK, ovariotropin, uvolňující hormon, ale profylaktické dávky jsou 2krát nižší než terapeutické.

Prevence luteálních cyst na vaječnících

Luteální cysty se vyvíjejí z degenerujících perzistujících žlutých tělísek, proto je prevence tohoto onemocnění založena na stejném principu jako prevence perzistujících žlutých tělísek.

Farmakoprofylaxe spočívá v následujícím: subkutánní injekce 2,5–3 tisíc IU SFA od 4. dne březosti. Poté aktivní pohyb s dávkovanou komunikací s testovacím býkem. Snížení stresových situací v budovách pro hospodářská zvířata, během pastvy a při aktivních procházkách.